Kontakt

Allgemeine Hinweise: 

Offene Hirnbiopsien / Lungenbiopsie u. ä. möglichst vorher telefonisch (Dienstarzt: 0221/478-32223) ankündigen.

Entnahme:

Gewebematerial ohne Fixierungsmittel/Formalin in ein großes, steriles Röhrchen geben.

Lagerung und Transport:

Idealerweise umgehend (innerhalb von 2h) ins Labor transportieren. Material aus primär sterilen Kompartimenten bitte bei Raumtemperatur, Material aus primär nicht sterilen Kompartimenten im Kühlschrank lagern

Allgemeine Hinweise:

Eine Untersuchung von Katheter-Spitzen ist allenfalls bei V. a. Katheterinfektion und in Verbindung mit der Entnahme von Blutkulturen sinnvoll. Hierfür sollte zur Bestimmung der Differential Time toPositivity jeweils peripher und aus dem Katheter mindestens ein Blutkultur-Set entnommen und mit Entnahmeort und Entnahmezeit und –datum gekennzeichnet werden.

Eine „routinemäßige“ Einsendung der Spitzen in die Mikrobiologie bei Entfernung des Katheters ohne Infektionsverdacht ist nicht sinnvoll.

Entnahme:

Katheter nach sorgfältiger Hautdesinfektion unter möglichst aseptischen Bedingungen ziehen, sofort mit einer sterilen Schere (das distale Ende der) Katheter-Spitze in einer Länge von 2-3 cm abschneiden und in ein leeres steriles Röhrchen ohne Flüssigkeit oder Zusätze geben.

Allgemeine Hinweise:

Bei Verdacht auf ambulant erworbene Meningitis oder bei septischem Krankheitsbild empfehlen wir dringend neben der Liquorpunktion die Abnahme von mindestens zwei Blutkultur-Sets.

Die Entnahme von Liquor und Blutkulturen sollte möglichst vor Beginn einer antibiotischen Therapie erfolgen. Bei Vorliegen von Kontraindikationen oder der Notwendigkeit einer vorherigen kranialen Bildgebung darf der Beginn einer antibiotischen Therapie aufgrund der Liquorpunktion jedoch nicht verzögert werden.

Entnahme:

Aseptische Punktion oder sterile Entnahme aus Ableitungssystemen.
Bei Anforderung verschiedener Untersuchungen (z.B. Kultur und PCR) idealerweise Einsendung von mehreren Gefäßen.

Volumen:

Auf ein ausreichendes Probenvolumen ist zu achten (siehe Tabelle):

Transport und Lagerung:

Rascher Transport (< 2h) ins IMMIH, bis zur Abholung Lagerung bei Raumtemperatur. Falls eine längere Transportzeit unvermeidbar ist und ausreichend Liquormaterial vorhanden ist, kann zusätzlich zum Nativ-Material eine Blutkulturflasche mit Liquor beimpft (Lagerung bei Raumtemperatur) und eingesandt werden.

• nur zur Tuberkulose-Diagnostik, wenn kein Sputum gewonnen werden kann; in diesem Fall bitte Magennüchternsekret schicken

• möglichst keinen Abstrich, sondern viel natives Material in ein großes steriles Röhrchen geben
• Bei verzögertem Transport können Punktate aus primär sterilen Kompartimenten (z. B. Gelenke, Pleura) zusätzlich in eine aerobe und eine anaerobe Blutkulturflasche (bei geringem Volumen ggf. PEDS-Blutkulturflasche) gegeben werden.
• Spritzen sind als Transportgefäße ungeeignet.
• Abszessmaterial ist durch aseptische Punktion zu gewinnen. Transmuköse Punktionen sollten aufgrund der höheren Kontaminationsgefahr vermieden und stattdessen aseptische, perkutane Punktionen bevorzugt werden. Ist eine Abszessspaltung geplant, so ist Material für die Mikrobiologie idealerweise vorab durch Punktion zu gewinnen. Ist dies nicht möglich, so ist unmittelbar nach Inzision unter aseptischen Bedingungen eine möglichst große Materialmenge in ein steriles Gefäß ohne Zusätze (kein Formalin) zu geben. Abstriche haben nur eine geringe diagnostische Aussagekraft und sollten nicht verwendet werden.
• Falls neben kulturellen Untersuchungen auch molekularbiologische Untersuchungen (PCR) durchgeführt werden sollen, empfehlen wir, das Material hierfür in einem gesonderten, entsprechend gekennzeichneten Probengefäß ohne Zusätze einzusenden.

Allgemeine Hinweise

Bei der Gewinnung von Sekreten aus den tiefen Atemwegen besteht die Kontamination durch physiologisches Schleimhautmikrobiom u. a. aus der Mundhöhle. Tiefe Atemwege sind Materialien aus den oberen Atemwegen überlegen.

Entnahme:

Bei Entnahme möglichst Kontakt mit Schleimhaut vermeiden. Geeignet sind sterile, leere Gefäße ohne Zusätze und mit Schraubdeckel, welcher sicher verschlossen werden muss.

BAL: mindestens 10 ml abnehmen; anästhesierende Gele können antimikrobiell wirken

Sputum: ist das Sekret der Atemwege, das beim Husten in den Rachen gelangt. Bei adäquater Gewinnung ist es die klassische, nicht invasiv zu gewinnende Untersuchungsprobe zur Diagnostik von Infektionen der tiefen Atemwege. Mindestens 2 ml gewinnen; besonders geeignet: Morgensputum; eine richtige Anleitung des Patienten (Sputum ≠ Speichel) ist essentiell für eine adäquate Probengewinnung:

• Ggf. Mund vorab mit physiologischer NaCl-Lösung ausspülen lassen
• Tief einatmen, wenige Sekunden die Luft anhalten, ausatmen
• Nach mehrmaliger Wiederholung Sputum aus der Tiefe möglichst ohne Speichelbeimengung in steriles Transportgefäß abhusten und sofort beim Personal abgeben

Trachealsekret/Bronchialsekret: mindestens 5 ml absaugen, idealerweise so weit wie möglich aus den tiefen Abschnitten des Bronchialbaumes

Transport und Lagerung:

Rascher Transport (< 2h) ins IMMIH, für 2 bis maximal 24 Stunden ist eine Lagerung im Kühlschrank möglich.

Allgemeine Hinweise:

Untersuchung auf Enteritis-Erreger (Campylobacter, Darm-pathogene Escherichia coli, Salmonellen, Shigellen, Yersiniaenterocolitica) sowie Toxin-bildende Clostridioides difficile. Um die Nachweisrate zu erhöhen, sollten 2-3 Stuhlproben in Folge eingeschickt werden. Eine sinnvolle Untersuchungsanforderung bei ambulant erworbener Diarrhoe ist der Nachweis von bakteriellen Erregern, wie Salmonellen, Shigellen, Yersinien, Campylobacter.

Bei antibiotischer Vorbehandlung oder nosokomial erworbener Diarrhoe sollte primär eine Untersuchung auf Clostridioidesdifficile-Toxin erfolgen. Bei Auftreten von Durchfällen ab dem 4. Tag nach stationärer Aufnahme ist eine Untersuchung auf die üblichen Enteritiserreger (Salmonellen, Shigellen, Yersinien und Campylobacter) nicht sinnvoll und kosteneffektiv, stattdessen wird entsprechend den aktuell gültigen mikrobiologischen Qualitätsstandards eine Untersuchung auf Clostridioidesdifficile-Toxin empfohlen.

Entnahme:

• Stuhl in sauberes Gefäß (z. B. Steckbecken) oder in eine frisch gespülte Toilettenschüssel entleeren
• mit dem im Transportgefäß enthaltenen Löffelchen Stuhl in das Transportröhrchen geben
• Bevorzugt aus blutigen, schleimigen oder eitrigen Anteilen

Volumen:

• Untersuchung auf Enteritis-Erreger: mindestens haselnussgroße Menge
• Untersuchung auf Clostridioidesdifficile: mindestens haselnussgroße Menge
• Untersuchung auf Parasiten: Stuhlröhrchen ca. zur Hälfte füllen; 2-3 Stuhlproben von unterschiedlichen Entnahmezeitpunkten einsenden

Lagerung und Transport:

Stuhlproben sollen idealerweise innerhalb von 2 Stunden ins IMMIH transportiert werden.

Harnwegsinfektionen (Anforderung E+R)

• Urin aus Blasendauerkathetern
  Ein besonderes Risiko der Kontamination besteht bei Gewinnung von Dauerkatheterurin. Die Probenentnahme erfordert daher eine exakte Entnahmetechnik. Die Uringewinnung erfolgt durch Punktion des Katheters nach Desinfektion an der bei den meisten handelsüblichen Ableitungssystemen bereits für die Punktion vorgesehenen Einstichstelle, niemals aus dem Auffangbeutel.
• Blasenpunktionsurin
  Durch suprapubische Aspiration von Blasenurin unter streng aseptischen Kautelen ist eine Kontamination der Probe nahezu ausgeschlossen. Indiziert ist eine Blasenpunktion aus mikrobiologischer Sicht bei Schwierigkeiten hinsichtlich einwandfreier Uringewinnung mit anderen Methoden sowie bei fraglichen bakteriologischen Ergebnissen aus Voruntersuchungen (z. B. Mischkulturen, unklare Leukozyturie).
• Urin aus Klebebeutelurin
  Urin aus Einmalplastikklebebeuteln bei Säuglingen kann nur für eine orientierende Untersuchung bzw. zum Ausschluss einer   Infektion benutzt werden
• Eintauchnährböden (z. B. Uricult®)
  Verwendung nur, wenn eine deutliche Überschreitung der Transportzeit von 2h zu erwarten ist und der Urin nicht im Kühlschrank gelagert werden kann.
  Anwendung: Mittelstrahlurin möglichst kontaminationsfrei in den Behälter abgeben und den beiliegenden Eintauchnährboden gleichmäßig und vollständig benetzen. Anschließend Urin vollständig aus dem Behälter abkippen und Schraubverschluss gut schließen.
  Nachteile: keine zuverlässige Keimzahlbestimmung möglich, keine Bestimmung von Leukozyten möglich; Befundverzögerungen um mindestens 24h. Daher ist Nativurin vorzuziehen.

Lagerung und Transport:
Urin ist grundsätzlich innerhalb von 2h ins Labor einzusenden; falls eine längere Lagerung   unumgänglich ist, ggf. im Kühlschrank (2-5 °C) aufbewahren
 

Sexuell übertragene Infektionen (STI)

Zum Nachweis von sexuell übertragenen Infektionen kann alternativ zu Urogenitalabstrichen auch (Erststrahl-)Urin eingeschickt werden. (Hier bitte Link zu Materialien aus dem Genitaltrakt/STI-Diagnostik)

Parasitendiagnostik (Schistosomiasis)

Mykobakteriendiagnostik (Urogenital-Tuberkulose)

Ca. 30 – 50 ml Morgenurin einsenden, bitte kein Sammelurin, bitte mindestens drei Proben von drei unterschiedlichen Tagen einsenden

Antigen-Tests für pulmonale Infektionen

• Pneumokokken-Antigen:
  Entnahme: kontaminationsarm entnommener Mittelstrahlurin 
  Lagerung: bei Raumtemperatur nicht länger als 24 h, bei 2-5   °C ggf. mehrere Tage möglich. Da die Antigen-Ausscheidung variieren kann, sind ggf. 2-3 Urinproben von unterschiedlichen Abnahmezeitpunkten zu untersuchen
• Legionellen-Antigen:  
  Nachweis von Legionella pneumophila Serogruppe 1 (keine Unterscheidung zwischen lebensfähigen und abgestorbenen Erregern)
  Entnahme: kontaminationsarm entnommener Mittelstrahlurin
  Lagerung: bei Raumtemperatur nicht länger als 24h möglich;   bei 2-5 °C ggf. mehrere Tage möglich

Eiter, Sekrete, Wundabstriche

Da von Abstrichen aus den oberflächlichen Bereichen aussagekräftige Befunde kaum zu erwarten sind, sollte das oberflächliche Sekret zunächst mit einem sterilen Tupfer aufgenommen und fibrinöse oder nekrotische Beläge abgehoben werden. Dann werden mit einem scharfen Löffel Gewebestücke vom Wundgrund und aus den Randbezirken der Läsion abgekratzt bzw., wenn noch genügend Sekret vorhanden ist, ein Abstrich abgenommen.

Vor der Materialentnahme aus Fistelgängen ist die Fistelöffnung mit alkoholischem Desinfektionsmittel zu desinfizieren (den Alkohol vollständig verdunsten lassen). Bei weitem Fistelgang kann mit einem Katheter Sekret aus der Tiefe angesaugt werden, evtl. muss Gewebe aus den tieferen Anteilen des Fistelgangs mit einer Kürette abgeschabt werden.

Von Abstrichen von oberflächlichen Wunden, Dekubitalulcera und Ulcera crures wird routinemäßig keine Anaerobierdiagnostik durchgeführt. Falls dies dennoch gewünscht wird, muss dies ausdrücklich auf dem Anforderungsbogen vermerkt und die Probe in einem Abstrichtupfer mit Transportmedium verschickt werden.

Bei tiefen Wunden muss versucht werden, Material aus Bereichen am Wundgrund zu gewinnen; evtl. Sekret mit einer Spritze aufziehen. Flüssige Sekrete werden in ein steriles Röhrchen gegeben; Abstriche in einem Röhrchen mit Transportmedium.

Für einen schnellen Transport des Materials ist zu sorgen.

Bitte kein Material in Spritzen einsenden!

Vorgehen zur Entnahme von Material aus (chronischen) Wunden:

• Unter aseptischen Bedingungen Entfernung von oberflächlichen Sekreten sowie von nekrotischen oder fibrinösen Belägen
• Entfernung von Gewebestücken aus dem Wundgrund sowie vom Randbereich der Läsion
• Bei Entleerung von Sekret dieses möglichst in einem sterilen Gefäß ohne ZSusätze auffangen
• Falls keine Entnahme von Gewebestücken möglich ist und nur geringe Sekretmengen vorhanden sind ggf. tiefen Wundabstrich entnehmen

Von Abstrichen von oberflächlichen Wunden sowie Material von Dekubitus und Ulcera wird routinemäßig keine Diagnostik auf obligate Anaerobier durchgeführt. Falls dies dennoch gewünscht wird, so ist dies dem Labor mitzuteilen.

Allgemeiner Hinweis: Bitte geben Sie das Abnahmedatum und insbesondere die Abnahmeuhrzeit an.

Entnahme: Bitte verwenden Sie ausschließlich die abgebildeten QFT-Plus Blutentnahmeröhrchen (siehe Abbildung): Nil, TB1, TB2, Mitogen und befüllen Sie jedes Röhrchen mit ca. 1 ml Blut. Dabei ist es wichtig, die schwarze Markierungslinie nicht zu überschreiten, da sonst der Test nicht auswertbar ist. Schwenken Sie jedes Röhrchen 10 mal, bis die gesamte Innenwand mit Blut benetzt ist. 

Transport und Lagerung: Die maximale Lagerungs- und Transportzeit beträgt 16 Stunden und sollte nicht überschritten werden. Von Abnahme der Röhrchen bis zum Eintrefffen in die Mikrobiologie ist eine Transporttemperatur zwischen 17 - 27°C einzuhalten. Röhrchen nicht vorinkubieren.